蛋白質(zhì)濃度測定是利用化學(xué)或物理方法測定蛋白質(zhì)濃度，一般蛋白濃度測定的方法有很多種，每種方法都有優(yōu)點和局限性，下面我們就具體看一下蛋白濃度測定的方法都有哪些。
 
蛋白濃度測定的方法：
1.紫外分光光度法：
紫外光譜吸收法測定蛋白質(zhì)含量是講蛋白質(zhì)溶液直接在紫外分光光度計中測定的方法，不需要任何試劑，操作簡單且易回收。蛋白質(zhì)溶液在280nm附近有強烈的吸收，這是由于蛋白質(zhì)中酪氨酸、色氨酸殘基而引起的，所以光密度受這兩種氨基酸含量的支配。另外核蛋白或提取過程中雜有的核酸對測定結(jié)果引起極大誤差，其最大吸收在260nm。所以同時測定280及260nm兩種波長的吸光度，通過計算可得較為正確的蛋白質(zhì)含量。
 
2.雙縮脲法
利用半飽和硫酸銨或27.8％硫酸鈉——亞硫酸鈉可使血清球蛋白沉淀下來，而此時血清白蛋白仍處于溶解狀態(tài)，因此可把兩者分開，這種利用不同濃度的中性鹽分離蛋白的方法稱為鹽方法。鹽析分離蛋白質(zhì)的方法不僅用于臨床醫(yī)學(xué)，而且還廣泛地用于生物化學(xué)研究工作中，如一些特殊蛋白質(zhì)—酶、蛋白激素等的分離和純化。
 
蛋白質(zhì)和雙縮脲一樣，在堿性溶液中能與銅離子形成紫色絡(luò)合物（雙縮脲反應(yīng)），且其呈色深淺與蛋白質(zhì)的含量成正比，因此可于蛋白質(zhì)的定量測定。
 
但必須注意，此反應(yīng)并非蛋白質(zhì)所特有，凡分子內(nèi)有兩個或兩個以上的肽鍵的化合物以及分子內(nèi)有—CH2—NH2等結(jié)構(gòu)化合物，雙縮脲反應(yīng)也呈陽性。本實驗用27.8％硫酸鈉—亞硫酸鈉溶液稀釋血清，取出一部分用雙縮脲反應(yīng)測定蛋白質(zhì)的含量，剩余部分則用濾紙過濾，使析出的球蛋白與白蛋白分離，取出濾液用同一反應(yīng)測定白蛋白的含量。總蛋白與白蛋白含量之差即球蛋白的含量。白蛋白與球蛋白之比即所謂的白／球比值。
 
3.Folin-酚試劑法
目前實驗室較多用Folin-酚法測定蛋白質(zhì)含量，此法的特點是靈敏度高，較雙縮脲高兩個數(shù)量級，較紫外法略高，操作稍微麻煩，反應(yīng)約在15分鐘有最大顯色，并最少可穩(wěn)定幾個小時，其不足之處是干擾因素較多，有較多種類的物質(zhì)都會影響測定結(jié)果的準(zhǔn)確性。其原理是蛋白質(zhì)中含有酚基的酪氨酸，可與酚試劑中的磷鉬鎢酸作用產(chǎn)生蘭色化合物，顏色深淺與蛋白含量成正比。
 
以上便是實驗室中常見的幾種蛋白濃度測定的方法，另外還有凱氏定氮法和BCA法，其中凱氏定氮法結(jié)果最精確，但操作復(fù)雜，BCA法以其試劑穩(wěn)定，抗干擾能力較強，結(jié)果穩(wěn)定，靈敏度高而受到歡迎。
 
素材來源于網(wǎng)絡(luò)。
想了解更多生化試劑知識，敬請關(guān)注“匯百試劑”官方網(wǎng)站：http://cubdqjz.cn
(本網(wǎng)站所有內(nèi)容，凡注明來源為“匯百試劑”，版權(quán)均歸匯百試劑所有，未經(jīng)授權(quán)，任何媒體、網(wǎng)站或個人不得轉(zhuǎn)載，否則將追究法律責(zé)任，授權(quán)轉(zhuǎn)載時須注明“來源：匯百試劑”。本網(wǎng)注明來源為其他媒體的內(nèi)容為轉(zhuǎn)載，轉(zhuǎn)載僅作觀點分享，版權(quán)歸原作者所有，如有侵犯版權(quán)，請及時聯(lián)系我們。)